论文摘要:本文根据植原体16S rDNA通用引物R16mF1/R16mR1,对陕西和山西具有枣疯病的植株的总DNA进行PCR扩增,分别得到1433bp和1432bp的条带,其二者同源性达到99%以上。通过此16S rDNA序列进行Blast检索,挑选27条关于16S rDNA具有明确分组的植原体序列,分析同源性并绘制其系统进化树,结果表明它们和16S rDNA V-B组的遗传距离最近。通过pDRAW32软件,用17种具有16S rDNA分组的典型的限制性内切酶模拟RFLP,结果表明它们和已报道的JWB的RFLP图谱相似。进一步验证枣疯病植原体属于16S rDNA V-B ,说明其地域变异性不大,有利于枣疯病检测技术的建立。
论文关键词:枣疯病,植原体,分子检测,同源性
前沿
枣树原产我国,具有较高的营养价值。近年来,随着生活水平的提高,枣产品的需求量不断增加,枣树的栽培面积迅速扩大。新疆近年来也大力发展枣树产业,使得枣产业在新疆果业中占有一定份量。但是随着种植面积的增大,枣树病害也成为制约枣产业发展的一个重要因素。枣疯病堪称枣树的“艾滋病”,是一种毁灭性病害。目前没有比较实效的根治方法,所以通过PCR技术检测枣疯病就显得更为重要。
枣疯病病原是类似于菌原体的一种极小的微生物,1994年第十届国际菌原体组织大会上改称为植原体。植原体属于柔膜菌纲、植原体属,是一类无坚固细胞壁、存在于植物韧皮部筛管细胞内的原核生物。本文通过获得枣疯病植原体的16SrDNA序列,对枣树的植原体进行同源性分析,构建其系统进化树,为建立更为有效的枣疯病检测体系奠定理论基础。
1材料与方法
1.1实验材料
分别在2009年7月在陕西和山西采取具有枣疯病症状的植株,在石河子大学试验站采取健康植株,保存在-70℃冰箱里。
1.2实验方法
1.2.1枣树总DNA的提取
称取0.1-0.2g叶片,在液氮中迅速研磨至粉末,将粉末迅速转入预冷的1.5mL离心管中,加入1mlSTE(700mmol/LNaCl,100mmol/L,100mmol/LTris-Cl和50mmol/LEDTA),再加入5μLβ-巯基乙醇(BME),迅速混匀,在4℃下7000r/min离心6min,弃上清液,加人700mL预热的CTAB提取缓冲液(100mmol/LpH8.0Tris-Cl,50mmol/LEDTA,1.4mol/LNaCl,2%PVP,3%CTAB,2%BME)和12.5μL的BME,迅速摇匀,在65℃水浴30min(每8-10min上下颠倒一次),水浴结束后,加入等体积氯仿-异戊醇(24:l)后轻轻混匀,4℃离心10min。取上清液至1.5ml离心管中,同上再抽提一次。加入1/5体积的5mol/LNaCl混匀,再加2/3体积冰冷的异丙醇,-20℃静置20min以上。最后12000r/min离心5min,用75%的乙醇清洗2-3次,在室温下干燥10min,使其尽可能干燥。最后加入含有RNase的TE溶解,并置于37℃水浴30min。电泳检测,保存在-20℃即可。
1.2.2PCR扩增
根据Lee报道的关于16SrDNA的引物对:R16mF2(5’-CATGCAAGTCGAACGGA-3’),R16mR1(5’-CTTAACCCCAATCATCGAC-3’)进行PCR扩增,以健康样品的总DNA和水为阴性对照,以带病样品的总DNA为阳性对照。反应体系为20?L,含有2?L10×PCRBuffer、1?L20?mol·L引物R16mF2、1?L20?mol·L、引物R16mR1、0.8?L0.25UdNTP、0.2?L1.25UTaqDNA聚合酶(上海生工公司),2?L枣树总DNA,13?LddHO。PCR反应程序:94℃预变性4min,94℃45s,56℃45s,72℃1min35个循环,72℃延伸10min。PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳检测(EB染色),紫外透射仪下观察,并拍照记录实验结果。
1.2.3克隆测序
用百泰克的凝胶回收试剂盒回收目的片段,对其连接转化涂板。用碱式裂解法,提出含有目的片段的质粒DNA,并且对其用R16mF2/R16mR1引物对进行PCR扩增,验证目的片段是否已经连接上。最后送往上海生工进行测序。
1.2.4目的片段的序列分析
将所得的目的片段,进行Blast检索分析,并把测序结果登录在GenBank中,通过挑选较为典型的序列,ClustalX1.81对其多条序列进行分析,通过MEGA32软件构建系统进化树。挑选AluⅠ、MseⅠ和Tsp509Ⅰ等17种限制性内切酶,利用软件pDRAW32模拟RFLP,分析确定其种属关系。
2实验结果
2.1DNA的提取
通过CTAB法,提取的DNA如图1,由于植原体在枣树中分部不均匀,应该根据不同时期采取不同组织,本实验采取样品为叶子和枝条。通过对总DNA的粗提取物和总DNA提纯后的物质进行比对,由于枣树含糖量比较高,所以提纯后DNA的电泳效果较好,但是进行PCR比较,未测发现二者差异性,是否提纯DNA对实验的影响不大。此方法可以应用于枣树总DNA的提取中。
2.2PCR检测
dns副本副本
通过对带病的两个不同品种进行PCR检测,均可以扩增出1400bp左右的大小条带,而健康植株中和水中均不能扩增出此特异性片段,说明患有枣疯病的枣树中含有植原体(图2)。
图1枣树总DNA提取电泳图谱图2枣疯病植株总DNA的PCR产物电泳图谱
Ck:健康植株SX:陕西病株SH:山西病株CK1:水CK2:健康植株SX:陕西病株SH:山西病株Fig.1ElectrophoresispatternofFig.2ElectrophoresispatternofPCRproductsof
totalDNAfromJujubetotalDNAfromJWB
CK:healthyJujubeSX:JWBfromShaanxiCK1:DoubledistilledwaterCK:healthyJujube
SH:JWBfromShanxiSX:JWBfromShaanxiSH:JWBFROMShanxi
2.3测序检测及同源性分析
通过上海生工进行测序,在陕西和山西的材料中分别获得1433bp(JWB-NTSH)和1432bp(JWB-NTSX)两条不同的片段,GC含量较高,在GenBank中的登录号分别为GU594058、GU574807。应用DNAman软件分析JWB-NTSH和JWB-NTSX,同源性达到99.37%,通过Blast对比,与报道的植原体相关片段的同源性达到88%以上(表1),说明枣树枣疯病植原体随地域的变异不大,并且变异的区域被发现在几个较为集中的碱基上,使得枣疯病植原体的分类比较容易,有利于进行PCR检测植原体病害的存在。
表1枣疯病植原体与16Sr各组植原体核苷酸同源性分析
Table1AnalysisofNucleotideofJujubeWitchesBroomPhytoplasmaandphytoplasmaof16Srgroup
亚组分类
subgroup
相关植原体株系
Associated phytoplasma
Genbank
登录号
Genbank Accession No.
核苷酸的同源性
Nucleotide homology(%)
16Sr Ⅰ-A
番茄巨芽Tomato big bud(TBB)
L33760
89.41%
16Sr Ⅰ-B
西方翠菊黄花Severe westem aster yellow(SAY)
M86340
89.21%
16Sr Ⅰ-C
三叶草绿变Clover phyllody(KVF)
AF222066
89.69%
16Sr Ⅰ-D
泡桐丛枝Paulownia witches’broom(PaWB)
AY265206
89.21%
16Sr Ⅰ-E
杏褪绿卷叶Blueberry stunt-16Sr-E
AY265213
89.13%
16Sr Ⅰ-F
草莓褪绿Apricot chlorotie leaf roll
AY265211
89.34%
16Sr Ⅱ-A
甘薯簇叶病Sweet potato witchs’ broom(SPWB)
DQ452417
88.80%
16Sr Ⅱ-B
酸橙丛枝Witches’broom of line (WBDL)
U15442
88.73%
16Sr Ⅱ-C
蚕豆变叶Faba bean phyllody (FBP)
X83432
88.31%
16Sr Ⅱ-D
甘薯小叶Sweet potato little leaf(SPLL-V4)
AJ289193
88.66%
16Sr Ⅱ-E
木瓜黄皱 apaya yellow crinkle(PpYC)
Y10097
88.66%
16Sr Ⅲ
桃西方X病Peach westem-X disease, WX
L04682
92.67%
16Sr Ⅳ
椰子致死黄花Coconut lethal yellowing(LY)
L18747
93.72%
16Sr Ⅴ-A
榆丛枝病Elm witches’-boom(ULW)
L33763
98.39%
16SrⅤ-B
枣疯病Jujube witches’-broom (JWB )
AY197661
99.65%
枣疯病山西株JWB-NTSH
GU594058
99.37%
16SrⅤ-C
悬钩子丛枝病Rubus stunt (RuS)
Y16395
90.00%
16Sr Ⅵ
三叶草簇叶Clover proliferation (CP)
L33761
92.74%
16SrⅦ
白蜡树黄化Ash yellows(AshY)
X68339
95.61%
16SrⅧ
丝瓜丛枝Loofah itches’broom(LfWB)
L33764
94.77%
16SrⅨ
木豆丛枝Pigeon pea witches’boom(PPWB)
AF248957
92.26%
16SrⅩ
苹果丛簇Apple proliferation(AP)
AF248958
90.01%
16SrⅩI
水稻黄矮Rice yellows dwarf (RYD)
D12581
93.23%
16SrⅩII
澳大利亚葡萄黄化Australian grapevine yellows(AGY)
X76427
87.87%
16SrⅩIII
墨西哥大草白叶Mexican periwinkle virescence(MPV)
AF248960
88.45%
16SrⅩIV
百慕大草白叶Bermuda grass white leaf (BWL)
EF444486
93.23%
16SrⅩV
扶桑丛枝Hibiscus witches -broom(HibWB)
AF147708
88.66%
2.4构建系统进化树
将JWB-NTSH和JWB-NTSX同已报道的16SrRNA进行对比,构建进化树,通过软件ClustalX1.81和软件的MEGA4构建进化树从GenBank中挑选植原体16SrDNA的15个种,27条具有确定种属关系的代表性序列(见表1),把这些序列通过ClustalX1.81进行分析,并应用MEGA4软件构建系统进化树。如图3所示,其中JWB-NTSX被划分到16SrDNAV-B中,和已知的枣疯病植原体属于同一个亚种,JWB-NTSH和JWB-NTSX还是有一定的差异性,说明枣疯病植原体随地域的变化可能发生变异,但是变异的碱基比较集中,和Blast中搜索的植原体变异的区域类似,说明同枣疯病植原体序列比较保守,这使得枣疯病的分类比较容易,更有利于枣疯病分类及其检测的研究。
图3枣疯病植原体及相关植原体16SrRNA基因核苷酸序列的系统发育树
Fig.3PhylogenetictreeofJWBandotherrelatedphytoplasmasbasedonthe16SrRNAgenesequences
2.4RFLP模拟
通过软件pDRAW32软件对JWB-NTSH,JWB-NTSX及JWB以及PPWB进行模拟RFLP试验,其中选取已报道的区别16SrDNA种属的17种典型的限制性内切酶。实验结果表明JWB-NTSX和JWB-NTSH及JWB酶切图基本相同,其中JWB-NTSH和JWB在HaeIII和MseI两处不同,JWB-NTSX和JWB在RsaI一处不同。说明JWB-NTSX和JWB的关系比JWB-NTSH和JWB的关系近。而JWB-NTSH和JWB-NTSX均和PPWB的酶切图在AluI、BstUI、DraI、HinfI等处不同,此结果进一步验证系统进化树的分析结果的正确性。说明来自陕西和山西的枣树植原体均属于16SrDNAV-B组。
图4JWB模拟RFLP图图5JWB-NTSHRFLP
Fig.4VirtualRFLPpatternsofJWB-NTSXFig.5VirtualRFLPpatternsofJWB
图6JWB-NTSX模拟RFLP图图7PPWB模拟RFLP图
Fig.6VirtualRFLPpatternsofJWB-NTSHFig.7VirtualRFLPpatternsofPPWB
3讨论
本文主要研究的是通过对患有枣疯病的植株进行总DNA提取,利用Lee设计的通用引物对枣疯病总DNA进行PCR扩增,克隆测序,获得16SrDNA的部分序列。通过研究16SrDNA的序列,发现来自陕西和山西不同地方的带病植株,其序列的同源性达到99.37%,与报道的植原体相关片段的同源性达到88%以上。通过查阅植原体16SrDNA相关文献,挑选出植原体16SrDNA的15个种,27条种属明确的代表性序列。通过构建系统分类树,发现JWB-NTSH和JWB-NTSX均属于16SrDNAV-B中,与已经报道的植原体分类相符合。同时挑选出关于植原体16SrDNA分类的典型的17种限制性内切酶,模拟RFLP对其分类做进一步验证,JWB-NTSX和JWB-NTSH及JWB酶切图基本相同,而JWB-NTSH和JWB-NTSX均和PPWB的酶切图在AluI、BstUI、DraI、HinfI等处不同,说明JWB-NTSX和JWB-NTSH及JWB亲缘关系比较近,和PPWB的亲缘性较远,此结果和构建的系统分类树分析结果是一致的,所以枣疯病植原体应该被分到16SrDNAV-B组中,为枣疯病植原体的分类提供可靠的分子水平的理论依据。
4结论
近年来,新疆枣树产业不断的发展,枣疯病的研究就显得极其重要。目前我们在新疆南疆发现具有枣疯病症状的植株,本文通过对枣疯病植原体16SrDNA进行PCR扩增检测,并且通过构建其系统分类树和模拟RFLP实验,确定出枣疯病植原体的变异随地区差异性较小,并进一步确定其属于16SrDNAV-B组,为建立更为灵敏准确的枣疯病检测体系建立理论基础。
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